Морфологія прямої кишки свині та людини у порівняльному аспекті за допомогою 3D реконструкції


Authors

  • Керечанин Ірина Приватний вищий навчальний заклад “Київський медичний університет”, Україна
  • Плахотний Роман Приватний вищий навчальний заклад “Київський медичний університет”, Україна
  • Яременко Лілія Національний медичний університет імені О.О. Богомольця, Україна
  • Ковальчук Наталія Приватний вищий навчальний заклад “Київський медичний університет”, Україна
  • Радомська Наталія Приватний вищий навчальний заклад “Київський медичний університет”, Україна
📧Corresponding author

Abstract

Знання структурної організації прямої кишки є фундаментом для розуміння етіології ректальної патології, клініки захворювання, техніки проведення діагностичних маніпуляцій, вибору методу лікування, у тому числі оперативного втручання.

У статті описана топографія, будова, вікові та гендерні особливості прямої кишки людини та свині у порівняльному аспекті. За допомогою сучасних методів, а саме 3D реконструкції відтворено будову прямої кишки людини та свині і з визначенням таких параметрів як розмір аноректального та ректосигмоїдного кутів, довжина прямої кишки та її частин.

Доведено, що морфологія прямої кишки людини та свині ідентична, отже свині можуть бути використані як біомоделі в експериментальних та клінічних дослідженнях з метою розробки нових методів лікування патології прямої кишки у людини.


Keywords

порівняльна анатомія біомодель пряма кишка

Download pdf

References

  1. Zakharash MP, Baliczkij VV, Kurik AG. Sovremennye khirurgicheskie tekhnologii v lechenii paczientov s sochetannoj patologiej analnogo kanala i pryamoj kishki. Klinicheskaya khirurgiya. 2018; Noyab, 22; 85 (11): 22-5.
  2. Pykov MY, Shaplov DS, Dzhavatkhanova RY, Demyna AM. Luchevaia dyahnostyka pry khronycheskykh zaporakh u detei. Medytsynskyi sovet. 2017; 1: 186-192. DOI: https://doi.org/10.21518/2079-701X-2017-1-186-192
  3. Rao SS, Bharucha AE, Chiarioni G, Felt-Bersma R, Knowles C, Malcolm A, Wald   A. Functional Anorectal Disorders. Gastroenterology. 2016; S0016-5085 (16) 00175-X. DOI: https://doi.org/10.1053/j.gastro.2016.02.009 [PMid:27144630 PMCid:PMC5035713]
  4. Wu XR, Liu XL, Katz S, Shen B. Pathogenesis, diagnosis, and management of ulcerative proctitis, chronic radiation proctopathy, and diversion proctitis. Inflamm Bowel Dis. 2015; 21 (3): 703-15. DOI: https://doi.org/10.1097/MIB.0000000000000227 [PMid:25687266]
  5. Amgad E. Salem, Elham A. Mohamed, Hosam M. Elghadban, Galal M. Abdelghani. Potential combination topical therapy of anal fissure: development, evaluation, and clinical study. Drug Deliv. 2018; 25 (1): 1672-1682. DOI: https://doi.org/10.1080/10717544.2018.1507059 [PMid:30430875 PMCid:PMC6237160]
  6. Blutke A, Renner S, Flenkenthaler F, Backman M, Haesner S, Kemter E, et al. The Munich MIDY Pig Biobank - a unique resource for studying organ crosstalk in diabetes. Mol Metab. 2017; 6 (8): 931-940. DOI: https://doi.org/10.1016/j.molmet.2017.06.004 [PMid:28752056 PMCid:PMC5518720]
  7. Bongoni AK, Kiermeir D, Schnider J, Jenni H, Garimella P, Bahr A, et al. Transgenic expression of human CD46 on porcine endothelium: effect on coagulation and fibrinolytic cascades during ex vivo human-to-pig limb xenoperfusions. Transplantation. 2015, 99 (10): 2061-9. DOI: https://doi.org/10.1097/TP.0000000000000746 [PMid:25965410]
  8. Cooper DK, Matsumoto S, Abalovich A, Itoh T, Mourad NI, Gianello PR, et al. Progress in clinical encapsulated islet xenotransplantation. Transplantation. 2016; 100: 2301-2308. DOI: https://doi.org/10.1097/TP.0000000000001371 [PMid:27482959 PMCid:PMC5077652]
  9. Frohlich T, Kemter E, Flenkenthaler F, Klymiuk N, Otte KA, Blutke A, et al. Progressive muscle proteome changes in a clinically relevant pig model of Duchenne muscular dystrophy. Scientific reports. 2016; 6: 33362. DOI: https://doi.org/10.1038/srep33362 [PMid:27634466 PMCid:PMC5025886]
  10. Kemter E, Wolf E. Pigs pave a way to de novo formation of functional human kidneys. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015; 20; 112 (42): 12905-12906. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1517582112 [PMid:26460047 PMCid:PMC4620893]
  11. Kleinwort KJH, Amann B, Hauck SM, Hirmer S, Blutke A, Renner S, et al. Retinopathy with central oedema in an INS C94Y transgenic pig model of long-term diabetes. Diabetologia. 2017; 60 (8): 1541-1549. DOI: https://doi.org/10.1007/s00125-017-4290-7 [PMid:28480495]
  12. Kristi L. Helke, Paula C. Ezell, Raimon Duran-Struuck, M. Michael Swindle. Biology and Diseases of Swine. Laboratory Animal Medicine. 2015: 695- 769. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-409527-4.00016-X [PMCid:PMC7149938]
  13. Kurome M, Leuchs S, Kessler B, Kemter E, Jemiller EM, Foerster B, et al. Direct introduction of gene constructs into the pronucleus-like structure of cloned embryos: a new strategy for the generation of genetically modified pigs. Transgenic research. 2017; 26 (2): 309-318. DOI: https://doi.org/10.1007/s11248-016-0004-z [PMid:27943082]
  14. Panychkyn YuV, Skyba IA, Zakharova VP, Beshliaha VM, Solomon VV, Ruzhyn YuA, et al. Osobennosty metodyky provedenyia doklynycheskoho eksperymenta po ymplantatsyy okkliudera yz β -tsyrkonyevoho splava na svyniakh kak byolohycheskoi modely. Sertse i sudyny. 2015; 4: 25-30.